Information

Varför använder vi en autoklav vid 121°C (250F)? (Ursprung)

Varför använder vi en autoklav vid 121°C (250F)? (Ursprung)



We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Låt mig börja med att säga att jag vet varför, men jag undrar mer om ursprunget.

Min fråga är mer relaterad till litteratur som jag inte verkar kunna hitta. Jag har hittat några användbara papper och information om ursprunget till att använda 121°C för att sterilisera utrustning och döda bakterier, men jag ville ändå ställa frågan och se om någon visste något mer om det.

Så för att upprepa min fråga vill jag se data om varför 121°C och inte 120°C?

Ursprungligen trodde jag att det berodde på att experimenten kan ha utförts i F och interkonverteringen från F till C gav 121°C vilket är ett udda tal.

Vad jag kunde förstå började det i livsmedelsindustrin med ett företag som tillverkade konserver och deras konserver exploderade. Detta företag kontaktade MIT och efter lite forskning fann de att vid 121°C (250F) under 60 minuter i retort skulle det döda sporerna som överlevde den tidigare bearbetningen. (ytterligare exp. minskade tiden till 10 min, för konserverade musslor)

Detta beskrivs i detalj i tidningen som publicerades 1897

https://www.jstor.org/stable/1623441?seq=1#metadata_info_tab_contents

Autoklaven uppfanns 1879 (18 år före publiceringen). I slutet av publikationen står det:

Detaljerade beskrivningar av organismerna och av många fler experiment kommer att ges i vår fullständiga uppsats om detta ämne för att visas i ett kommande nummer av Teknik kvartalsvis

Jag har inte kunnat hitta denna specifika fråga om Teknik kvartalsvis

Författarna (S.C. Prescott och W. Lyman Underwood) säger också:

Som vi har visat i vår tidigare artikel, för att säkerställa sterilisering i praktiken, är det nödvändigt att erhålla och bibehålla en temperatur på över 121°C (212F) genom hela burkens innehåll. Intermittent sterilisering kan användas, men är mindre effektiv och är inte genomförbar i stor eller kommersiell skala. Vi har genom experiment funnit att sextio minuter vid 121°C (250F) är tillräcklig tid för att sterilisera majs, och det verkar troligt att denna kan förkortas något eller temperaturen sänkas.

De använder °C, men eftersom det är 1890-talet kan retorter (autoklaver) som används i livsmedelsindustrin vara F och författarna har förmodligen konverterat avläsningar av retortutrustning till °C för forskarsamhället.

Det var också det som var pionjären i termisk dödsstudie och om man tittar på temperaturen som de använde för studien är de lite sporadiska. Förmodligen för att de ville se vilken temperatur + tid som skulle nå mitten av burken. Längden på uppvärmningen, eller bearbetningen, och trycket som ges varierar något i olika fabriker och det kan ha varit det som ledde dem till 121°C och inte 120°C.

Ytterligare forskning gjordes inom detta område: 1956 och 1958 fann F. H. Deindoerfer & A. E. Humhrey att 250F (121C) är den optimala temperaturen för att undvika skada på näringsmedia. De diskuterade också analytiska metoder för värmesteriliseringstider.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1057515/

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1057690/

Det jag specifikt har letat efter är den första termiska dödsstudien med D&Z-värden som ledde till den utbredda användningen av 121°C. Andy varför den tid och psi som krävs för att sterilisera biologiska prover. Jag vet och hittade papper om vad som används för att validera autoklaver.

Geobacillus sterothermophilus (känd som Bacillus sterothermophilus också) används för att validera autoklaver och det beror på att den är mycket värmebeständig, vilket gör en bra biologisk indikator på mikrobiellt liv efter sterilisering. Det ena papper jag hittade som hade några grafiska data om dess termiska dödlighet använder °C istället för F. Jag verkar inte hitta någon information om den bakteriella Log-reduktionen vid 120 °C jämfört med 121 °C. Det här svaret kan lika gärna vara en matematisk ekvation som leder till den temperaturen, men det är bara platsen jag inte har utforskat

Papper på Geobacillus sterothermophilus: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1057891/

Om någon kan hitta det Teknik kvartalsvis papper jag nämnde i början som skulle vara bra.


Anledningen till 121°C och inte 120°C beror på hur autoklaver fungerar och hur de utvecklades. De steriliseras med mättad ånga under tryck. Historiskt sett mäter vi trycket som genereras av ångan. Vilket leder direkt till svaret.

Ångkraft var grunden för industriell process på 1800-talet och för att kunna använda den på ett säkert sätt krävdes övervakning och kontroll av panntrycket. Pannexplosioner var inte ovanliga under ångkraftens tidiga dagar. Bourdon-tryckmätaren uppfanns 1849 och var en robust teknik som gav tillförlitlig och exakt mätning av ångtrycket.

https://journals.sagepub.com/doi/pdf/10.1177/002029408702000803

När Chamberland uppfann autoklaven 1879 från Papains tidigare tryckkokare, förlitade den sig uteslutande på tryckmätning för kontroll. Inte förrän 1933 tillverkades autoklaver som övervakade temperaturen vid avloppsledningen för att bekräfta att luften var uttömd och att ångan verkligen var mättad. https://www.steris.com/healthcare/knowledge-center/sterile-processing/everything-about-autoclaves

Studier av ångmaskiner låg till grund för utvecklingen av termodynamiken och den kinetiska molekylära teorin om gaser. Även om ånga är långt ifrån en idealisk gas, finns det ett förutsägbart samband mellan temperatur och tryck i mättad ånga samt väletablerade egenskaper för värmeöverföring. Dessa kan hittas på standardtekniska ångbord.

Exempel: https://www.engineersedge.com/thermodynamics/steam_tables.htm

Mättad ånga är mycket effektiv för att överföra värme. Det är därför skållningsskador är så allvarliga jämfört med enkla brännskador vid samma temperaturer. Det är också hur mättad ånga dödar även värmebeständiga mikroorganismer i en autoklav. https://learnaboutgmp.com/good-manufacturing-practices-cgmp/saturated-steam-efficient-sterilization/

En jordatmosfär av tryck vid havsnivån definieras som 14,69 pund per kvadrattum (psi), även om det i verkligheten varierar lite på grund av temperatur och väder. På grund av denna variation och för att människor använder arabiska siffror, aritmetik och algebra som heltalsenheter i 5:or; ingenjörer tänker ofta på 1 atmosfärs tryck som 15 psi. Denna mängd mättad ångtryck ligger väl inom kapaciteten hos typiska ångpannor. Denna trevliga omgång av 15 psi mättad ånga kommer att döda även mycket resistenta bakteriella endosporer på cirka 15 minuter. En mycket rimlig tidsram och en trevlig mnemonik: 15 psi i 15 minuter.

Temperaturen på de där 15 psi mättad ånga? 121°C.

Och det är därför vi använder en mycket ovanlig 121°C för typisk autoklavering. Det beror på att vi verkligen använder en rundad enjordsatmosfär av ångtryck. Och vi gjorde det utan oro för direkt temperaturmätning under de första 50 åren av autoklavanvändning. På många sätt var temperaturen i autoklaven av underordnad betydelse.


Steriliseringsprocedurer för vävnadsallotransplantat

Abstrakt:

Slutsterilisering av förseglade förpackningar som innehåller hälsovårdsprodukter, biomaterial och vävnadsallotransplantat kan vara den valda steriliseringsmetoden, särskilt för dyra artiklar med låg produktionsvolym som läkemedelsprodukter och biomaterial som ben, hud, senor och annat mjukt material som används av vävnadsbanker. Validering av sterilitet till sterilitetssäkringsnivåer på 1:10 6 är baserad på ett statistiskt tillvägagångssätt och kan komplettera eller ersätta andra metoder som att använda aseptisk kontroll av produktionsmiljön. Det här kapitlet går igenom det aktuella tillståndet för steriliseringsprotokollen för joniserande strålning och deras tillämpningar på ett brett utbud av hälsovårdsprodukter och biomaterial.


Vad är autoklav (sterilisering med ånga)?

Sterilisering är förstörelsen av alla former av mikrobiellt liv, vilket verifieras genom att demonstrera dödandet av mycket resistenta bakteriesporer. Det är den högsta nivån av mikrobiell dödande. Sterilisering med ånga eller autoklavering är en av de vanligaste och mest använda metoderna för sterilisering i tandläkarmottagningar. Processen hänvisar till en process av instrumentsterilisering som använder tid, temperatur och tryck för att döda alla former av mikrobiellt liv, inklusive sporer. En autoklav är en tryckkammare, ett slags kärl som använder högtrycksånga för att sterilisera utrustning och förnödenheter. Detta tros vara en av de mest effektiva metoderna för sterilisering, som förstör alla mikroorganismer, både patogena och icke-patogena, inklusive sporer och virus. Autoklavering kräver minst 121 grader Celsius (250 grader Fahrenheit) med ett ångtryck på 15 pund per kvadrattum (psi), i 15 minuter för att säkerställa sterilisering.


Beredning av MacConkey-agar

  1. Väg och suspendera 50 gram MacConkey-agarpulver (se tillverkarens instruktioner) i 1 liter renat vatten och blanda noggrant.
  2. Värm med frekvent omrörning och koka i 1 minut för att helt lösa upp pulvret. vid 121°C i 15 minuter.
  3. Kyl till 45-50°C, blanda väl och häll ca 20-25 ml i sterila petriplattor och låt stelna.
  4. Efter stelning av plattorna, märk mediaplattorna med namn och beredningsdatum (på baksidan av mediet eftersom lock kan bytas ut)
  5. Förvaras upp och ned (med locket nere) vid 2-8°C fram till användning.

Du kan också köpa den färdiga MacConkey-agaren från kommersiella leverantörer.


Earle H Spaulding (1968) amerikansk läkare

  • Föreslog att hur ett föremål ska desinficeras eller steriliseras berodde på föremålets avsedda användning.
  • Spauldings klassificeringssystem:
    • KRITISK – föremål som kommer in i normalt steril vävnad eller kärlsystemet eller genom vilka blod strömmar bör vara sterila.
    • SEMIKRITISKT – föremål som rör vid slemhinnor eller hud som inte är intakt kräver en desinfektionsprocess (högnivådesinfektion[HLD]) som dödar alla mikroorganismer men ett stort antal bakteriesporer.
    • ICKE KRITISK -Föremål som endast vidrör intakt hud kräver lågnivådesinfektion.

    1989, ett ozon sterilisator för hälsovårdsapplikationer, utvecklad av Life Support, Inc., Erie, Pennsylvania, godkändes för marknadsföring av FDA.

    Också 1989, Steris System 1*, ett lågtemperaturperättiksyrasystem för endoskopiska enheter kommer in på den amerikanska marknaden. *I maj 2008, t FDA förkastade Steris System 1 och Steris var tvungen att dra tillbaka den från marknaden.

    Även 1989, den STATIM höghastighetsångautoklav introducerades också i USA av SciCan, Inc., Toronto, Ontario.

    1993 godkände FDA Sterrad Sterilizer, ett plasmasteriliseringssystem, för användning i USA.


    Innehåll

    Stora graderade cylindrar är vanligtvis gjorda av polypropen för sin utmärkta kemikaliebeständighet eller polymetylpenten för sin transparens, vilket gör dem lättare och mindre ömtåliga än glas. Polypropen (PP) är lätt att autoklavera upprepade gånger, men autoklavering över cirka 121 °C (250 °F) (beroende på den kemiska formuleringen: typisk kommersiell kvalitet polypropen smälter över 177 °C (351 °F)), kan deformera eller skada polypropen graderade cylindrar, vilket påverkar noggrannheten. [1]

    En traditionell graderad cylinder är vanligtvis smal och hög för att öka noggrannheten och precisionen i volymmätningen. Den har en plast- eller glasbotten (stativ, fot, stöd) och en "pip" för enkel hällning av den uppmätta vätskan. En extra version är bred och låg.

    Blandningscylindrar har slipade glasfogar istället för en pip, så de kan stängas med en propp eller ansluta direkt till andra delar av ett grenrör. [2] Med denna typ av cylinder häller den uppmätta vätskan inte direkt, utan tas ofta bort med en kanyl. En graderad cylinder är avsedd att avläsas med vätskans yta i ögonhöjd, där mitten av menisken visar mätlinjen. Typiska kapaciteter för graderade cylindrar är från 10 mL till 1000 mL.

    Graderade cylindrar används ofta för att mäta volymen av en vätska. Graderade cylindrar är i allmänhet mer exakta och exakta än laboratoriekolvar och bägare, men de bör inte användas för att utföra volymetrisk analys. exakt. Graderade cylindrar används ibland för att mäta volymen av ett fast ämne indirekt genom att mäta förskjutningen av en vätska.

    För noggrannhet avbildas volymen på graderade cylindrar på skalor med 3 signifikanta siffror: 100mL cylindrar har 1ml graderingsavdelningar medan 10mL cylindrar har 0,1 mL graderingsavdelningar.

    Två klasser av noggrannhet finns för graderade cylindrar. Klass A har dubbelt så stor noggrannhet som klass B. [4] Cylindrar kan ha enkel eller dubbel skala. Enkla skalor gör det möjligt att avläsa volymen uppifrån och ned (påfyllningsvolym) medan dubbelskala cylindrar tillåter avläsning för fyllning och hällning (omvänd skala).

    Graderade cylindrar är kalibrerade antingen "att innehålla" (indikerad vätskevolym inuti cylindern) och märkta som "TC" eller "att leverera" (indikerad vätskevolym som hälls ut, med hänsyn till vätskespår kvar i cylindern) och märkta "TD". [5] Tidigare var toleranserna för "att leverera" och "att innehålla" cylindrar olika, men nu är dessa desamma. Dessutom är det mer sannolikt att de internationella symbolerna "IN" och "EX" används istället för "TC" respektive "TD". [6]

    För att avläsa volymen korrekt måste observationen vara i ögonhöjd och avläsas längst ner på en menisk av vätskenivån. [7] Huvudskälet till varför avläsningen av volymen görs via menisken beror på vätskans natur i ett slutet omgivet utrymme. Av naturen skulle vätska i cylindern attraheras av väggen runt den genom molekylära krafter. Detta tvingar vätskeytan att utveckla antingen en konvex eller konkav form, beroende på typen av vätska i cylindern. Att läsa av vätskan i den nedre delen av en konkav eller den övre delen av den konvexa vätskan motsvarar att läsa vätskan vid dess menisk. [8] Från bilden kommer vätskenivån att avläsas i botten av menisken, som är den konkava. Den mest exakta av avläsningen som kan göras här är reducerad till 1 ml på grund av det givna mätmedlet på cylindern. Från detta skulle det härledda felet vara en tiondel av den minsta siffran. Till exempel, om avläsningen är gjord och det beräknade värdet är inställt på 36,5 mL. Felet, ge eller ta 0,1 mL, måste också inkluderas. Därför motsvarar det mer exakta värdet 36,5 ± 0,1 36,4 eller 36,6 mL. Därför finns det 3 signifikanta siffror som kan avläsas från den givna graderade cylinderbilden. [9] Ett annat exempel, om avläsningen är gjord och det beräknade värdet är satt till 40,0 mL. Det exakta värdet skulle vara 40,0 ± 0,1 40,1 eller 39,9 mL. [10]

    Två graderade cylindrar. En traditionell graderad cylinder (A på bilden) och blandningscylindrar (B på bilden)


    Inokulera agarplattor och försegla dem

    Inskickad av Science ASSIST Team på ons, 2015-06-03 22:14

    Säkerhetsfrågor är ett viktigt övervägande inom mikrobiologi, eftersom det finns en potential för smittsamma faror. Det är strikt iakttagande av korrekta rutiner som gör det möjligt för elever och personal att arbeta säkert med mikroorganismer. När man arbetar med mikroorganismer är det bäst att behandla dem alla som potentiella patogener (1) .

    För närvarande i Australien är vissa mikrobiologiska aktiviteter tillåtna i vissa jurisdiktioner och inte i andra. Därför bör du kontrollera de aktiviteter som är tillåtna i din jurisdiktion innan du fortsätter. Science ASSIST håller på att konsultera myndigheter för att ge nationellt konsekventa förnuftiga och genomförbara rekommendationer för bästa praxis inom skolmikrobiologi.

    Det är viktigt att vara medveten om möjliga faror och risker innan arbeta med mikroorganismer. Därför rekommenderar Science ASSIST att en riskbedömning genomförs och lämpliga kontrollåtgärder vidtas. Science ASSIST har utvecklat en riskbedömningsmall på en sida för att hjälpa till med detta (se mall för riskbedömning).

    Inokuleringstekniker som vanligtvis används i skolor:

    Följande länk innehåller bra allmän information om praktisk mikrobiologi inklusive detaljerade procedurer för följande inokuleringstekniker.

    Mikroorganismer kan inokuleras på agarplattor i skollaboratorier med olika metoder.

    1) Ympning av plattor via luftexponering (sedimenteringsplattor):

    Petriskålar lämnas öppna i luften på olika ställen i laboratoriet under en tid innan locken sätts tillbaka, förseglas med 4 bitar tejp och inkuberas. Tallrikar bör inte lämnas öppna i områden som toaletter.

    2) Inokulering genom direktkontakt.

    Mikroorganismer överförs direkt till en agarplatta genom att röra ytan på agaren med ett föremål som ett mynt. Att röra vid agaren med fingerspetsen rekommenderas inte, eftersom detta kan möjliggöra tillväxt av patogener.

    3) Inokulering av plattor med sterila pinnar från miljöprover:

    En steril pinne fuktas i steril buljong eller vatten och torkas över området som ska provtas. Pinnen flyttas sedan över agarplattans yta i sicksack (2) för att överföra eventuella mikroorganismer. Pinnen kan slängas i soporna eftersom den inte har använts för att torka av områden som innehåller några patogener. Som en extra försiktighetsåtgärd kan pinnen placeras i en nyberedd desinfektionslösning som 0,25 % natriumhypoklorit i 2 timmar innan den kastas i soporna.

    4) Ympning av tallrikar med bakteriologiska slingor från livsmedelsprover som yoghurt eller ost:

    En värmesteriliserad slinga kan användas för att prova från ett yoghurt- eller ostprov. Slingan används för att smeta ut provet antingen i sicksack över ytan av agar, som beskrivits ovan, eller placeras på en sektion av ytan av en agarplatta och sedan strök ut för enstaka kolonier som beskrivs nedan.

    Notera: Ovanstående kulturer anses vara "vilda kulturer" och bör inte öppnas eller subkultur. Agarplattorna bör steriliseras innan de kasseras. När observationerna är klara ska plattorna dekontamineras genom sterilisering i en autoklav eller tryckkokare innan de slängs i avfallskärlet. Agarplattor måste placeras i en autoklaverbar påse, såsom en ugnspåse, för sterilisering vid 110 kPa/15psi, 121 °C i 15–20 minuter i en autoklav eller tryckkokare innan de kasseras.

    Kom ihåg att märka plattans bas runt kanten (3) snarare än i mitten, där eventuell tillväxt kan skymmas, och inkubera plattan upp och ner för att förhindra att kondens som bildas på locket droppar på agaren som påverkar kolonierna växer på ytan.

    Tätning av agarplattor:

    Fullständig försegling av petriskålar under inkubation bör undvikas, eftersom detta kan generera en anaerob miljö som hämmar tillväxten av aeroba mikroorganismer och främjar tillväxten av potentiellt anaeroba patogener (se nedan för mer information). Science ASSIST rekommenderar att locket och basen på petriskålen tejpas med 4 bitar tejp (2, 3) för att tillåta aeroba förhållanden och för att förhindra oavsiktlig öppning av tallriken under inkubation. Plattorna kan förseglas med tejp, eller helst Parafilm, helt runt omkretsen innan de låter eleverna undersöka dem. Detta kommer att förhindra all exponering för fukt eller dropp som kan sippra ut ur petriskålen, som är potentiella infektionskällor, samt hålla locket ordentligt fastsatt på basen. Alla observationer måste ske med petriskålen tejpad. Parafilm är en laboratorietätningsfilm med unika egenskaper. Det är en stretchig, vaxartad film som är mycket bra på att forma runt toppen av provrör, flaskor, flaskor och runt petriskålar för att ge en tät tätning. Det är mycket effektivare än tejp.

    Viktig bakgrundsinformation:

    Skolvetenskapliga laboratorier klassificeras som (PC1) Fysisk inneslutning nivå 1, om de uppfyller kraven i AS/NSZ 2243.3-2010. Säkerhet i laboratorier. Del 3. Mikrobiologisäkerhet och inneslutning. PC1-laboratorier är lämpliga för arbete med riskgrupp 1-mikroorganismer endast. Dessa är infektiösa mikroorganismer som är "sannolikt inte orsaka sjukdomar hos människor, växter eller djur" och "där laboratoriepersonal kan skyddas på ett adekvat sätt av standardlaboratoriepraxis” (4) .

    Anaeroba mikroorganismer:

    Tillväxt av anaeroba mikroorganismer, de som inte kan odlas i närvaro av syre, bör undvikas i skollaboratorier. Anaerober är utbredda i naturen och är potentiellt patogena (kan orsaka sjukdomar) när de avlägsnas från sin normala miljö (5) . De flesta anaerober faller under riskgrupp 2 eller 3 mikroorganismer som inte ska hanteras i PC1-laboratorier och är förknippade med många sjukdomar, till exempel tandinfektioner, bölder, lunginflammation och blindtarmsinflammation. Det är viktigt att procedurer och tekniker som används vid hantering av mikrober i skollaboratoriet inte ger anaeroba förhållanden som kan välja för tillväxt av patogena anaeroba organismer.

    Förfaranden för att förhindra tillväxt av patogener:

    Förutom att inte helt täta agarplattor under inkubation, finns det andra procedurer som bör utföras i skollaboratorier för att förhindra tillväxt av patogena organismer.

    • Vid hantering av mikroorganismer är det viktigt att alltid använda aseptiska tekniker. En betydande risk förknippad med mikrobiologi är genereringen av mikrobiella aerosoler, där fina vattendroppar som innehåller celler och/eller sporer släpps ut i luften.
    • Aseptisk teknik är en grundläggande färdighet inom mikrobiologi:
      • för att undvika kontaminering av odlingsmedier med oönskade mikrober,
      • för att förhindra kontaminering av personal och arbetsytor, och
      • för att förhindra att mikrober av misstag släpps ut i miljön.
      • Näringsagar är ett enkelt medium som stödjer tillväxten av en mängd olika bakterier och mögel och är lämplig för användning i skollaboratorier.
      • Medier utformade för att välja efter mer kräsna mikroorganismer och patogener som Blood och MacConkey Agar borde inte användas.

      Försiktighetsåtgärder vid inokulering av agarplattor.

      • Tvätta händerna med tvål och vatten före och efter arbete med mikroorganismer.
      • Täck eventuella skärsår med ett vattentätt förband och överväg att bära engångshandskar.
      • Se till att arbetsytor är dekontaminerade före och efter arbete med mikroorganismer med 70 % etanol.
      • Se till att inokuleringsinstrument (öglor, svabbar, pipetter och spridare) är steriliserade före och efter användning.
      • Se till att inokuleringsinstrument som innehåller mikrobiologiska prover inte får vidröra någon annan yta än den agar som kräver inokulering.
      • Flamma munnen på alla provrör och flaskor både när locket tas av och innan det sätts tillbaka.
      • Plattorna bör vara öppna under en kortare tid för att minimera risken för att föroreningar kommer in från luften.
      • Ympning bör utföras så snabbt som möjligt för att minimera införandet av eventuella föroreningar.
      • Arbeta nära Bunsen-lågan, eftersom den ger en uppströmning som leder bort luft från arbetsytan, vilket minskar föroreningar från luften.
      • Ha ett kit för bakteriespill tillgängligt (nyberedd 1% natriumhypoklorit, hink, mopp, plastavfallspåsar, pappershanddukar, engångshandskar, skyddsglasögon, mask, engångsförkläde av plast).

      Subkultur:

      Science ASSIST söker för närvarande råd angående följande aktiviteter i skolor. För närvarande är de tillåtna i vissa jurisdiktioner och inte i andra. Lärare som handleder elever som utför dessa aktiviteter bör ha mikrobiologisk utbildning.

      1. Sträckplåtsmetod:

      Principen för denna metod är den gradvisa utspädningen av ett inokulum av bakterier över ytan av en agarplatta för att producera enstaka isolerade rena kolonier. En liten mängd prov placeras på en del av ytan av en agarplatta med antingen en steril pinne eller flammad inokuleringsögla. Detta kallas det initiala inokulumet. Slingan steriliseras och används för att sprida ut det initiala inokulumet i en riktning för att göra flera strimmor. Detta kallas den första uppsättningen av streaks. Slingan steriliseras igen genom att flamma och strimningsprocessen upprepas 2–3 gånger till, varje gång går tillbaka till föregående uppsättning ränder. Efter inkubation bör enstaka kolonier ses i den sista uppsättningen av ränder. Varje koloni produceras från en enda bakteriecell när den förökar sig.

      2. Inokulering av plattor med pipetter och glasspridare för att producera gräsmatta plattor:

      Sterila bomulls-pluggade graderade pipetter eller pasteurpipetter kan användas för att leverera 2–3 droppar bakterier från näringsbuljongkulturer till ytan av en agarplatta. En steril glasspridare används sedan för att sprida dropparna jämnt över agarens yta. Denna teknik används för att förbereda en gräsmatta eller spridningskultur, där hela plattans yta är likformigt täckt med bakterier. Det används ofta för att testa antimikrobiella ämnen som antibiotika och desinfektionsmedel, eller för att utföra koloniräkningar. Pipetten och spridaren ska dekontamineras genom autoklavering eller placeras i en desinfektionslösning omedelbart efter användning och före rengöring.

      Mikroorganismer som inte kräver syre för tillväxt. Syre används inte för att få energi och är giftigt för dessa mikroorganismer. De kallas ofta strikta eller obligatoriska anaerober.

      Fakultativa anaeroba mikroorganismer:

      Mikroorganismer som växer i antingen frånvaro eller närvaro av syre. De kan metabolisera energi aerobt eller anaerobt. Syre är inte giftigt för dessa mikroorganismer.

      En mikroorganism som kan orsaka sjukdom.

      Den aseptiska överföringen av en mikroorganism från en agarplatta till en annan färsk agarplatta för att tillåta den att kontinuerligt växa.

      (2) "Riktlinjer för bästa praxis för mikrobiologi i australiensiska skolor". Science ASSIST webbplats, https://assist.asta.edu.au/resource/4196/guidelines-best-practice-microb. (Tillagd oktober 2019)

      (3) Society for General Microbiology UK. 2006. Grundläggande praktisk mikrobiologi, en handbok . Microbiology Online-webbplats: http://www.microbiologyonline.org.uk/file/ca2189fba3b39d24c5a44c1285d008.

      (4) Standarder Australien. 2010. AS/NZS 2243 Säkerhet i laboratorier, del 3: 2010 Mikrobiologisk säkerhet och inneslutning. Sydney, Australien.

      (5) Hentges, David J. "Anaerobes: General Characteristics" i Baron S, (Redaktör) 1996. Medicinsk mikrobiologi. 4:e upplagan. University of Texas Medical Branch: Galveston (TX). National Center for Biotechnology Information webbplats https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK7638/

      NSW Department of Education and Communities 'Chemical Safety in Schools (CSIS)' resurspaket. NSW DEC webbplats https://education.nsw.gov.au/ DEC Intranät, inloggning krävs.

      (4) Detta utdrag från AS/NZS 2243 Säkerhet i laboratorier, del 3: 2010 Mikrobiologisk säkerhet och inneslutning har reproducerats med tillstånd från SAI Global Ltd under licens 1407-c117

      Tack för att du skickade in ett svar på denna fråga. Ditt svar har skickats till vårt administrationsteam för moderering.


      EXPERIMENT FÖR ATT VISA BAKTERIERS TILLVÄXT - grundläggande tekniker

      Bakterier kommer att växa på praktiskt taget alla källor av ekologisk mat som ger kol föreningar att andas för energi, och kväve föreningar som ska ingå i proteiner för tillväxt. Dessa ämnen tillhandahålls normalt lösta i vatten. Men i naturen kan bakterier bryta ner fasta och olösliga ämnen genom att frigöra dem enzymer in i substratet där de växer. Dessa ämnen bryts alltså ner eller smälts till enklare ämnen och processen kallas extracellulär matsmältning eftersom det sker utanför bakteriecellerna.

      De två normala media som används inom bakteriologi är en klar soppliknande vätska näringsbuljong, vanligtvis i rör, och näringsagar, som sätts till en gelé genom tillsats av ett tångextrakt som kallas agar, och när det smält hälls det i glas eller plast Petriskålar - även känd som "tallrikar".

      En standard kolkälla är glukos, och kväve tillhandahålls ofta av peptoner (delvis smält proteiner), eller oorganiska salter. Mineraler och vitaminer kan också tillhandahållas, beroende på bakteriens tillväxtbehov. Kombinationer av kemikalier (buffertar) kan användas för att hålla pH stabilt. Uppmätta mängder av koncentraten tillsätts till vatten och löses för att rekonstituera mediet.

      Ibland blandas ämnen i media för att undertrycka tillväxten av andra typer av bakterier. Det finns många sådana selektiva medier.

      Mikrobiologiska tekniker

      Sterilisering, aseptiska tekniker, ympning, inkubation

      Dessa medier måste då vara steriliserad genom att värma i en autoklav (som en tryckkokare) vid 121 C (tryck 1 bar eller 15 lb/sq. in.) i 15 minuter, vilket dödar alla levande organismer, inklusive sporer.

      All utrustning som används från denna tidpunkt och framåt måste steriliseras genom värme (glasvaror - 160 C i 2 timmar) eller exponering för strålning.

      Aseptiska tekniker måste användas för att minska sannolikheten för bakteriell kontaminering. Detta innebär vanligtvis desinfektion av arbetsområden, vilket minimerar möjlig tillgång för bakterier från luften till exponerade medier och användning av lågor för att döda bakterier som kan komma in i kärlen när de öppnas.

      Bakterier kan introduceras till media (inokulerade) på olika sätt. Vanligtvis är bakterierna t.ex. från en droppe i en värmesteriliserad ögla sprids på ytan av (färdig härdad) agar. En liknande teknik används med buljongkulturer. Ibland introduceras bakterier i en vätska med hjälp av en steril pipett till petriskålen innan det (ganska svala) agarmediet hälls ovanpå ("hällplattor").

      Då är petriskålarna som innehåller agar eller rör som innehåller buljong inkuberades, d.v.s. sätt in en speciell apparat vid en fast temperatur (vanligtvis 37 C - mänsklig kroppstemperatur, för möjliga patogener - eller 25 C för bakterier från miljön). I skolor används lägre inkubationstemperaturer för att motverka tillväxten av potentiella patogener.

      När man odlar bakterier är det vanligt att vända petriskålarna för att förhindra att kondensdroppar faller ned på agarens yta. Petriskålar är ofta "förseglade" i detta skede för att förhindra att människor som hanterar dem kontamineras av bakterier, som kommer att föröka sig kraftigt. Det är normalt att använda 2 remsor med tejp från basen till locket istället för att försöka täta den cirkulära kanten på petriskålen. Detta för att skydda mot möjligheten att anaeroba organismer växer på grund av brist på luft. Man måste dock komma ihåg att eventuella droppar från en delvis försluten petriskål är potentiella infektionskällor.

      Resultat

      Flytande media såsom buljong bli molnig om det finns bakterier. Detta kan vara resultatet av att endast en bakteriecell ursprungligen kom in i mediet och sedan delade sig upprepade gånger för att producera miljoner!


      Bakterier på agar "plattor" blir synliga som distinkt cirkulära kolonier varje koloni bör representera en enskild bakteriecell (eller grupp) som har delat sig upprepade gånger, men eftersom de hålls på ett ställe har de resulterande cellerna ackumulerats för att bilda en synlig fläck.


      Genom en förlängning av denna metod med hjälp av seriella utspädningar in sterilised liquids, the number of bacteria in a given amount of sample, e.g. food, can be calculated.


      After use, bacterial cultures, etc. must be sterilised by the use of heat, before disposal.


      REAGENTS AND SOLUTIONS

      Lugol's iodine 1% (w/v)

      • Weigh 0.1 g iodine (I2) and 0.2 g potassium iodide (KI).
      • Dissolve the solids in 30 ml dH2O.
      • Store up to 1 year at room temperature

      YP maltose

      • Weigh 10 g yeast extract and 20 g bactopeptone into a 1-L bottle
      • Add 900 ml of dH2O
      • Sterilize by autoclaving for 20 min at 121°C
      • After autoclaving, add 100 ml of a 20% (w/v) maltose stock solution
      • Store up to several weeks at room temperature
      • Weigh 10 g yeast extract and 20 g bactopeptone in a 1-L bottle
      • Add 900 ml of dH2O
      • Sterilize by autoclaving for 20 min at 121°C
      • After autoclaving, add 100 ml of a 20% (w/v) d -glucose stock solution
      • Store up to several weeks at room temperature

      Zinc chloride solution

      • Prepare a stock solution of zinc chloride at 200 ppm (417 mg/L ZnCl2).
      • Sterilize by autoclaving for 20 min at 121°C
      • Store up to several at room temperature

      Innehåll

      Aseptic technique is a key component of all invasive medical procedures. Similar control measures are also recommended in any healthcare setting to prevent the spread of infection generally. [ citat behövs ]

      Hand hygiene Edit

      Hand hygiene is one of the basic, yet most important steps in IPC (Infection Prevention and Control). Hand hygiene reduces the chances of HAI (Healthcare Associated Infections) drastically at a floor-low cost. Hand hygiene consists of either hand wash(water based) or hand rubs(alcohol based). Hand wash is a solid 7-steps according to the WHO standards, wherein hand rubs are 5-steps. [ citat behövs ]

      Independent studies by Ignaz Semmelweis in 1846 in Vienna and Oliver Wendell Holmes, Sr. in 1843 in Boston established a link between the hands of health care workers and the spread of hospital-acquired disease. [3] The U.S. Centers for Disease Control and Prevention (CDC) state that "It is well documented that the most important measure for preventing the spread of pathogens is effective handwashing". [4] In the developed world, hand washing is mandatory in most health care settings and required by many different regulators. [ citat behövs ]

      In the United States, OSHA standards [5] require that employers must provide readily accessible hand washing facilities, and must ensure that employees wash hands and any other skin with soap and water or flush mucous membranes with water as soon as feasible after contact with blood or other potentially infectious materials (OPIM). [ citat behövs ]

      In the UK healthcare professionals have adopted the 'Ayliffe Technique', based on the 6 step method developed by Graham Ayliffe, JR Babb and AH Quoraishi. [6]

      Mean percentage changes in bacterial numbers
      Method used Change in
      bacteria present
      Paper towels (2-ply 100% recycled). - 48.4%
      Paper towels (2-ply through-air dried, 50% recycled) - 76.8%
      Warm air dryer + 254.5%
      Jet air dryer + 14.9%

      Drying is an essential part of the hand hygiene process. In November 2008, a non-peer-reviewed [7] study was presented to the European Tissue Symposium by the University of Westminster, London, comparing the bacteria levels present after the use of paper towels, warm air hand dryers, and modern jet-air hand dryers. [8] Of those three methods, only paper towels reduced the total number of bacteria on hands, with "through-air dried" towels the most effective. [ citat behövs ]

      The presenters also carried out tests to establish whether there was the potential for cross-contamination of other washroom users and the washroom environment as a result of each type of drying method. De fann att:

      • the jet air dryer, which blows air out of the unit at claimed speeds of 400 mph, was capable of blowing micro-organisms from the hands and the unit and potentially contaminating other washroom users and the washroom environment up to 2 metres away
      • use of a warm air hand dryer spread micro-organisms up to 0.25 metres from the dryer
      • paper towels showed no significant spread of micro-organisms.

      In 2005, in a study conducted by TUV Produkt und Umwelt, different hand drying methods were evaluated. [9] The following changes in the bacterial count after drying the hands were observed:

      Drying method Effect on bacterial count
      Paper towels and roll Decrease of 24%
      Hot-air drier Increase of 117%

      Cleaning, Disinfection, Sterilization Edit

      The field of infection prevention describes a hierarchy of removal of microorganisms from surfaces including medical equipment and instruments. Cleaning is the lowest level, accomplishing substantial removal. Disinfection involves the removal of all pathogens other than bacterial spores. Sterilization is defined as the removal or destruction of ALL microorganisms including bacterial spores. [ citat behövs ]

      Cleaning Edit

      Cleaning is the first and simplest step in preventing the spread of infection via surfaces and fomites. Cleaning reduces microbial burden by chemical deadsorption of organisms (loosening bioburden/organisms from surfaces via cleaning chemicals), simple mechanical removal (rinsing, wiping), as well as disinfection (killing of organisms by cleaning chemicals). [ citat behövs ]

      In order to reduce their chances to contract an infection, individuals are recommended to maintain a good hygiene by washing their hands after every contact with questionable areas or bodily fluids and by disposing of garbage at regular intervals to prevent germs from growing. [10]

      Disinfection Edit

      Disinfection uses liquid chemicals on surfaces and at room temperature to kill disease causing microorganisms. Ultraviolet light has also been used to disinfect the rooms of patients infected with Clostridium difficile after discharge. [11] Disinfection is less effective than sterilization because it does not kill bacterial endospores. [12]

      Sterilization Edit

      Sterilization is a process intended to kill all microorganisms and is the highest level of microbial kill that is possible. [ citat behövs ]

      Sterilization, if performed properly, is an effective way of preventing Infections from spreading. It should be used for the cleaning of medical instruments and any type of medical item that comes into contact with the blood stream and sterile tissues. [ citat behövs ]

      There are four main ways in which such items are usually sterilized: autoclave (by using high-pressure steam), dry heat (in an oven), by using chemical sterilants such as glutaraldehydes or formaldehyde solutions or by exposure to ionizing radiation. The first two are the most widely used methods of sterilization mainly because of their accessibility and availability. Steam sterilization is one of the most effective types of sterilizations, if done correctly which is often hard to achieve. Instruments that are used in health care facilities are usually sterilized with this method. The general rule in this case is that in order to perform an effective sterilization, the steam must get into contact with all the surfaces that are meant to be disinfected. On the other hand, dry heat sterilization, which is performed with the help of an oven, is also an accessible type of sterilization, although it can only be used to disinfect instruments that are made of metal or glass. The very high temperatures needed to perform sterilization in this way are able to melt the instruments that are not made of glass or metal.

      Effectiveness of the sterilizer, for example a steam autoclave is determined in three ways. [12] First, mechanical indicators and gauges on the machine itself indicate proper operation of the machine. Second heat sensitive indicators or tape on the sterilizing bags change color which indicate proper levels of heat or steam. And, third (most importantly) is biological testing in which a microorganism that is highly heat and chemical resistant (often the bacterial endospore) is selected as the standard challenge. If the process kills this microorganism, the sterilizer is considered to be effective. [12]

      Steam sterilization is done at a temperature of 121 C (250 F) with a pressure of 209 kPa (

      2atm). In these conditions, rubber items must be sterilized for 20 minutes, and wrapped items 134 C with pressure of 310 kPa for 7 minutes. The time is counted once the temperature that is needed has been reached. Steam sterilization requires four conditions in order to be efficient: adequate contact, sufficiently high temperature, correct time and sufficient moisture. [13] Sterilization using steam can also be done at a temperature of 132 C (270 F), at a double pressure.

      Dry heat sterilization is performed at 170 C (340 F) for one hour or two hours at a temperature of 160 C (320 F). Dry heat sterilization can also be performed at 121 C, for at least 16 hours. [14]

      Chemical sterilization, also referred to as cold sterilization, can be used to sterilize instruments that cannot normally be disinfected through the other two processes described above. The items sterilized with cold sterilization are usually those that can be damaged by regular sterilization. A variety of chemicals can be used including aldehydes, hydrogen peroxide, and peroxyacetic acid. Commonly, glutaraldehydes and formaldehyde are used in this process, but in different ways. When using the first type of disinfectant, the instruments are soaked in a 2–4% solution for at least 10 hours while a solution of 8% formaldehyde will sterilize the items in 24 hours or more. Chemical sterilization is generally more expensive than steam sterilization and therefore it is used for instruments that cannot be disinfected otherwise. After the instruments have been soaked in the chemical solutions, they must be rinsed with sterile water which will remove the residues from the disinfectants. This is the reason why needles and syringes are not sterilized in this way, as the residues left by the chemical solution that has been used to disinfect them cannot be washed off with water and they may interfere with the administered treatment. Although formaldehyde is less expensive than glutaraldehydes, it is also more irritating to the eyes, skin and respiratory tract and is classified as a potential carcinogen, [13] so it is used much less commonly.

      Ionizing radiation is typically used only for sterilizing items for which none of the above methods are practical, because of the risks involved in the process

      Personal protective equipment Edit

      Personal protective equipment (PPE) is specialized clothing or equipment worn by a worker for protection against a hazard. The hazard in a health care setting is exposure to blood, saliva, or other bodily fluids or aerosols that may carry infectious materials such as Hepatitis C, HIV, or other blood borne or bodily fluid pathogen. PPE prevents contact with a potentially infectious material by creating a physical barrier between the potential infectious material and the healthcare worker. [15]

      The United States Occupational Safety and Health Administration (OSHA) requires the use of personal protective equipment (PPE) by workers to guard against blood borne pathogens if there is a reasonably anticipated exposure to blood or other potentially infectious materials. [16]

      Components of PPE include gloves, gowns, bonnets, shoe covers, face shields, CPR masks, goggles, surgical masks, and respirators. How many components are used and how the components are used is often determined by regulations or the infection control protocol of the facility in question, which in turn are derived from knowledge of the mechanism of transmission of the pathogen(s) of concern. Many or most of these items are disposable to avoid carrying infectious materials from one patient to another patient and to avoid difficult or costly disinfection. In the US, OSHA requires the immediate removal and disinfection or disposal of a worker's PPE prior to leaving the work area where exposure to infectious material took place. [17] For health care professionals who may come into contact with highly infectious bodily fluids, using personal protective coverings on exposed body parts improves protection. [18] Breathable personal protective equipment improves user-satisfaction and may offer a similar level of protection. [18] In addition, adding tabs and other modifications to the protective equipment may reduce the risk of contamination during donning and doffing (putting on and taking off the equipment). [18] Implementing an evidence-based donning and doffing protocol such as a one-step glove and gown removal technique, giving oral instructions while donning and doffing, double gloving, and the use of glove disinfection may also improve protection for health care professionals. [18]

      The inappropriate use of PPE equipment such as gloves, has been linked to an increase in rates of the transmission of infection, [19] and the use of such must be compatible with the other particular hand hygiene agents used. [20] Research studies in the form of randomized controlled trials and simulation studies are needed to determine the most effective types of PPE for preventing the transmission of infectious diseases to healthcare workers. There is low quality evidence that supports making improvements or modifications to personal protective equipment in order to help decrease contamination. [18] Examples of modifications include adding tabs to masks or gloves to ease removal and designing protective gowns so that gloves are removed at the same time. In addition, there is weak evidence that the following PPE approaches or techniques may lead to reduced contamination and improved compliance with PPE protocols: Wearing double gloves, following specific doffing (removal) procedures such as those from the CDC, and providing people with spoken instructions while removing PPE. [18]

      Antimicrobial surfaces Edit

      Microorganisms are known to survive on non-antimicrobial inanimate 'touch' surfaces (e.g., bedrails, over-the-bed trays, call buttons, bathroom hardware, etc.) for extended periods of time. [21] [22] This can be especially troublesome in hospital environments where patients with immunodeficiencies are at enhanced risk for contracting nosocomial infections.

      Products made with antimicrobial copper alloy (brasses, bronzes, cupronickel, copper-nickel-zinc, and others) surfaces destroy a wide range of microorganisms in a short period of time. [23] The United States Environmental Protection Agency has approved the registration of 355 different antimicrobial copper alloys and one synthetic copper-infused hard surface that kill E coli O157:H7, methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), Stafylokock, Enterobacter aerogenes, och Pseudomonas aeruginosa in less than 2 hours of contact. Other investigations have demonstrated the efficacy of antimicrobial copper alloys to destroy Clostridium difficile, influenza A virus, adenovirus, and fungi. [23] As a public hygienic measure in addition to regular cleaning, antimicrobial copper alloys are being installed in healthcare facilities in the UK, Ireland, Japan, Korea, France, Denmark, and Brazil. The synthetic hard surface is being installed in the United States as well as in Israel. [24]

      Health care workers may be exposed to certain infections in the course of their work. Vaccines are available to provide some protection to workers in a healthcare setting. Depending on regulation, recommendation, the specific work function, or personal preference, healthcare workers or first responders may receive vaccinations for hepatitis B influenza measles, mumps and rubella Tetanus, diphtheria, pertussis N. meningitidis and varicella. [25]

      Surveillance is the act of infection investigation using the CDC definitions. Determining the presence of a hospital acquired infection requires an infection control practitioner (ICP) to review a patient's chart and see if the patient had the signs and symptom of an infection. Surveillance definitions exist for infections of the bloodstream, urinary tract, pneumonia, surgical sites and gastroenteritis.

      Surveillance traditionally involved significant manual data assessment and entry in order to assess preventative actions such as isolation of patients with an infectious disease. Increasingly, computerized software solutions are becoming available that assess incoming risk messages from microbiology and other online sources. By reducing the need for data entry, software can reduce the data workload of ICPs, freeing them to concentrate on clinical surveillance.

      As of 1998, approximately one third of healthcare acquired infections were preventable. [26] Surveillance and preventative activities are increasingly a priority for hospital staff. De Study on the Efficacy of Nosocomial Infection Control (SENIC) project by the U.S. CDC found in the 1970s that hospitals reduced their nosocomial infection rates by approximately 32 per cent by focusing on surveillance activities and prevention efforts. [27]

      In healthcare facilities, medical isolation refers to various physical measures taken to interrupt nosocomial spread of contagious diseases. Various forms of isolation exist, and are applied depending on the type of infection and agent involved, and its route of transmission, to address the likelihood of spread via airborne particles or droplets, by direct skin contact, or via contact with body fluids.

      In cases where infection is merely suspected, individuals may be quarantined until the incubation period has passed and the disease manifests itself or the person remains healthy. Groups may undergo quarantine, or in the case of communities, a cordon sanitaire may be imposed to prevent infection from spreading beyond the community, or in the case of protective sequestration, into a community. Public health authorities may implement other forms of social distancing, such as school closings, when needing to control an epidemic. [28]

      Barriers to the ability of healthcare workers to follow PPE and infection control guidelines include communication of the guidelines, workplace support (manager support), the culture of use at the workplace, adequate training, the amount of physical space in the facility, access to PPE, and healthcare worker motivation to provide good patient care. [29]

      Facilitators include the importance of including all the staff in a facility (healthcare workers and support staff) should be done when guidelines are implemented. [29]

      When an unusual cluster of illness is noted, infection control teams undertake an investigation to determine whether there is a true disease outbreak, a pseudo-outbreak (a result of contamination within the diagnostic testing process), or just random fluctuation in the frequency of illness. If a true outbreak is discovered, infection control practitioners try to determine what permitted the outbreak to occur, and to rearrange the conditions to prevent ongoing propagation of the infection. Often, breaches in good practice are responsible, although sometimes other factors (such as construction) may be the source of the problem. [ citat behövs ]

      Outbreaks investigations have more than a single purpose. These investigations are carried out in order to prevent additional cases in the current outbreak, prevent future outbreaks, learn about a new disease or learn something new about an old disease. Reassuring the public, minimizing the economic and social disruption as well as teaching epidemiology are some other obvious objectives of outbreak investigations. [30]

      According to the WHO, outbreak investigations are meant to detect what is causing the outbreak, how the pathogenic agent is transmitted, where it all started from, what is the carrier, what is the population at risk of getting infected and what are the risk factors. [ citat behövs ]

      Practitioners can come from several different educational streams. Many begin as nurses, some as medical technologists (particularly in clinical microbiology), and some as physicians (typically infectious disease specialists). Specialized training in infection control and health care epidemiology are offered by the professional organizations described below. Physicians who desire to become infection control practitioners often are trained in the context of an infectious disease fellowship. Training that is conducted "face to face", via a computer, or via video conferencing may help improve compliance and reduce errors when compared with "folder based" training (providing health care professionals with written information or instructions). [18]

      In the United States, Certification Board of Infection Control and Epidemiology is a private company that certifies infection control practitioners based on their educational background and professional experience, in conjunction with testing their knowledge base with standardized exams. The credential awarded is CIC, Certification in Infection Control and Epidemiology. It is recommended that one has 2 years of Infection Control experience before applying for the exam. Certification must be renewed every five years. [31]

      A course in hospital epidemiology (infection control in the hospital setting) is offered jointly each year by the Centers for Disease Control and Prevention (CDC) and the Society for Healthcare Epidemiology of America. [32]

      Australien Edit

      In 2002, the Royal Australian College of General Practitioners published a revised standard for office-based infection control which covers the sections of managing immunisation, sterilisation and disease surveillance. [33] [34] However, the document on the personal hygiene of health workers is only limited to hand hygiene, waste and linen management, which may not be sufficient since some of the pathogens are air-born and could be spread through air flow. [35] [36]

      Since 1 November 2019, the Australian Commission on Safety and Quality in Health Care has managed the Hand Hygiene initiative in Australia, an initiative focused on improving hand hygiene practices to reduce the incidence of healthcare associated infections. [37]

      USA Redigera

      Currently, the federal regulation that describes infection control standards, as related to occupational exposure to potentially infectious blood and other materials, is found at 29 CFR Part 1910.1030 Bloodborne pathogens. [38]


      Titta på videon: Bēgot ar zagtu automašīnu, veic virkni likumpārkāpumu (Augusti 2022).